| 성상 | 제조방법 별첨 뒤에 작성 |
|---|---|
| 업체명 | (주)에스디 |
| 전문/일반 | 전문의약품 |
| 허가일 | 2009-01-19 |
| 품목기준코드 | 200900700 |
| 표준코드 | 8806618011603, 8806618011610 |
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사람 혈청 중 엘리자 (Enzyme Linked Immunosorbent Assay, ELISA)법을 통한 뎅기 NS1 항원의 정성검사
1. 시험 준비 및 보관
1) 검체의 준비 및 보관, 재사용
(1) 혈청만 검체로 사용할 수 있다.
(2) 정맥 천자로 채혈한 혈액을 항응고제가 들어 있지 않은 튜브에 수집한다.
(3) 실온에 약 30분간 방치해 응고가 일어나도록 한 후 원심분리에 의해 상청의 혈청을 분리시킨다.
(4) 용혈이 심하거나 미생물에 오염된 검체의 경우는 부정확한 결과를 나타낼 수 있으므로 주의한다.
(5) 분리된 혈청은 2 ~ 8℃에서 보관 시 3일간, -20℃ 이하에서 냉동 보관 시 1년간 사용 가능하다.
(6) 검체는 사용 전에 충분히 혼합한다. 특히 동결되었던 시료는 반드시 혼합기를 이용하여 균질화 시킨 후 사용한다.
2) 시약의 준비 및 보관
[시액의 조제]
(1) 효소표지항체액 준비
농축 효소표지항체액 (101배 농축액)과 효소표지항체 희석액을 사용하고자 하는 well 수에 따라 필요한 양만큼 1 : 100 으로 혼합한다.
(2) 세척액의 준비
농축 세척액 (20배 농축액)을 정제수 (탈이온수나 증류수) 로 20배 희석한다. 세척액은 한 well 당 약 350㎕가 소요된다. (예 : 증류수 950ml에 농축세척액 50ml을 첨가하여 세척액을 조제한다.)
(3) 기질용액의 준비
기질용액을 사용하고자 하는 well 수에 따라 기질액 A와 기질액 B를 1:1의 비율로 잘 섞은 후 기질반응에 사용한다. (예 : 기질액 A 5ml과 기질액 B 5ml을 잘 섞어 기질용액을 조제한다.)
[조제한 시액의 보관조건 및 사용기간]
| 조제시약 |
보관조건 |
사용기간 |
| 효소표지항체액 |
2 ~ 8℃ |
조제후 4주일 이내 |
| 세척액 |
실온(15~30℃) |
조제후 2주일 이내 |
| 2 ~ 8℃ |
조제후 3개월 이내 |
|
| 기질용액 |
실온(15~30℃), 밀봉, 암소 |
조제후 4시간 이내 |
[개봉한 시약의 보관조건 및 사용기간]
| 개봉시약 |
보관조건 |
사용기간 |
| 항체 흡착 플레이트 |
2 ~ 8℃, 밀봉 |
킷트의 사용기간이내에서 개봉후 1개월 |
| 농축 효소표지항체액 (101배 농축액) |
2 ~ 8℃ |
킷트의 사용기간이내에서 개봉후 3개월 |
| 검체희석액 |
2 ~ 8℃ |
킷트의 사용기간이내에서 개봉후 3개월 |
| 음·양성 대조액 |
2 ~ 8℃ |
킷트의 사용기간이내에서 개봉후 3개월 |
| 기질액 (A 및 B) |
2 ~ 8℃ (밀봉, 암소) |
킷트의 사용기간이내에서 개봉후 3개월 |
| 농축 세척액 (20배 농축애) |
2 ~ 8℃ |
킷트의 사용기간 이내 |
| 반응 정지액 |
실온 |
킷트의 사용기간 이내 |
3) 키트의 보관
(1) 키트는 2 ~ 8℃에서 냉장 보관한다.
(2) 키트는 밀봉된 상태에서 패키지 또는 각 시약의 라벨에 인쇄된 사용기간까지 안정하 다.
2. 검사 과정
[검사방법 요약표]
| 단계 |
조작명 |
사용 구성물 |
조작 내용 |
| 1 |
준비 |
전체 구성물 |
검사 시작 30분전에 상온에 방치 |
| 2 |
항체흡착 플레이트에 검사할 시료 분주 |
음·양성대조액 및 검사하려는 시료 |
음·양성대조액 및 검사하려는 시료를 50㎕씩 항체 흡착 플레이트 각 well에 분주한 후 잘 혼합 |
| 3 |
검체 희석액의 준비 |
검체 희석액 |
검체 희석액을 50㎕씩 항체 흡착 플레이트 각 well에 분주한 후 잘 혼합 |
| 4 |
밀봉 및 혼합 |
검사하려는 시료와 검체희석액이 첨가된 항체 흡착 플레이트, 플레이트 밀봉 테이프 |
플레이트를 밀봉 테이프로 덮고 믹서로 잘 섞어준다. |
| 5 |
항온 |
검사하려는 시료와 검체희석액이 첨가된 항체 흡착 플레이트 |
37±1℃에서 60분 반응 |
| 6 |
세척액의 준비 및 세척 |
농축 세척액 (20배 농축액), 제조된 세척액 |
농축 세척액 (20배 농축액)을 정제수로 20배 희석하여 필요한 만큼의 세척액을 조제 후, 350㎕씩 각 well에 분주하여 5회 세척하고, 반응하고 남은 내용물을 제거 |
| 7 |
효소표지항체액의 분주 |
희석된 효소표지항체액 |
희석된 효소표지항체액을 100㎕씩 항체 흡착 플레이트 각 well에 분주하고 잘 혼합 |
| 8 |
밀봉 및 혼합 |
검사하려는 시료와 검체희석액이 첨가된 항체 흡착 플레이트, 플레이트 밀봉 테이프 |
플레이트를 밀봉 테이프로 덮고 믹서로 잘 섞어준다. |
| 9 |
항온 |
검사하려는 시료가 첨가된 항체 흡착 플레이트 |
37±1℃에서 60분 반응 |
| 10 |
세척액의 준비 및 세척 |
농축 세척액 (20배 농축액), 제조된 세척액 |
농축 세척액 (20배 농축액)을 정제수로 20배 희석하여 필요한 만큼의 세척액을 조제 후, 350㎕씩 각 well에 분주하여 5회 세척하고, 반응하고 남은 내용물을 제거 |
| 11 |
기질용액의 준비 |
기질액 A 기질액 B |
기질액 A와 기질액 B를 1:1로 섞어 제조 |
| 12 |
기질용액 첨가 |
제조된 기질용액 |
기질용액을 각 well에 100㎕씩 첨가한다. |
| 13 |
항온 |
기질용액이 첨가된 플레이트 |
실온(15~30℃)에서 10분간 반응 |
| 14 |
반응정지액 첨가 |
반응정지액 |
반응정지액을 각 well에 100㎕씩 첨가 |
| 15 |
흡광도 측정 |
흡광도 측정기 |
30분 이내에 450 nm에서 흡광도를 측정 (이중파장흡광도측정기를 사용할 경우 참조파장을620 nm로 한다.) |
[검사방법]
1)검사에 필요한 well 수를 결정(음성 대조액 3 wells, 양성 대조액 2 wells 및 검사하고자 하는 시료) 하고 사용하고 남은 well 은 자체 은박포에 실리카겔과 함께 밀봉하여 2 ~ 8℃에 보관한다.
2) 음성 대조액, 양성 대조액 및 검사하고자 하는 시료를 항체가 코팅된 플레이트 각 well에 50㎕씩 분주하고 잘 혼합한다.
3) 상기 2)의 시료가 분주된 플레이트에 검체 희석액을 플레이트 각 well에 50㎕씩 분주하고 잘 혼합한다.
4) 플레이트를 밀봉 테이프로 덮고 믹서로 잘 섞어준다.
5) 첨부된 밀봉테이프로 밀봉하여 37±1℃ 항온기에서 60분 반응시킨다.
6) 세척액을 ‘시액의 조제’항에 따라 조제한 후, 각 well의 내용물을 흡입하고 세척액으로 다음과 같은 방법으로 5회 세척한다. 우선 well 내의 내용물을 흡입장치로 제거한 후, 세척액을 well에 완전히 채우고 (well당 약 350㎕씩) 약 10초 정도 방치한 후, 용액을 흡입하는 방법으로 5회 반복한 다음, well 내에 남아있을 수 있는 잔여 용액을 완전히 제거한다.
6-1) 세척 과정
가. 자동 세척
(1) 자동 세척기를 이용하여 5회 세척한다.
(2) 5회의 세척 과정이 끝나면, 플레이트를 뒤집어 흡습타월에 대고 털어서, 완전히 세척액이 제거될 수 있도록 한다 .
나. 수동 세척
(1) 적당한 용기를 사용하여 각 well의 잔여 용액을 완전히 제거한다.
(2) 각 well에 희석된 세척액 350 ㎕씩 분주한다. 이 때, 세척액에 거품이 생기지 않도 록 주의한다. 분주 후 즉시 세척액을 제거한다.
(3) 위 (2)번 과정을 4번 더 반복하여, 총 5회 세척한다.
(4)마지막 세척 과정이 끝난 후, 플레이트를 뒤집어 흡습지에 대고 털어서, 완전히 세 척액이 제거될 수 있도록 한다 .
7) 세척이 끝난 플레이트에 희석된 효소표지항체액을 흡착 플레이트 각 well에 100㎕씩 분주하고, 잘 혼합한다.
8) 플레이트를 밀봉 테이프로 덮고 믹서로 잘 섞어준다.
9) 첨부된 밀봉테이프로 밀봉하여 37±1℃ 항온기에서 60분 반응시킨다.
10) 반응 후 각 well의 내용물을 흡입하고 세척액으로 다음과 같은 방법으로 5회 세척한다. 우선 well 내의 내용물을 흡입장치로 제거한 후, 세척액을 well에 완전히 채우고 (well당 약 350㎕씩) 약 10초 정도 방치한 후, 용액을 흡입하는 방법으로 5회 반복한 다음, well 내에 남아있을 수 있는 잔여 용액을 완전히 제거한다.
11) 기질용액을‘시액의 조제’항에 따라 조제한다.
12) 조제한 기질용액을 모든 well에 100㎕씩 분주하고 첨부된 밀봉테이프로 밀봉한다.
13) 실온(15~30℃) 에서 10분 동안 반응시킨다.
14) 반응 정지액을 모든 well 에 각 well 당 100㎕씩 넣고 잘 혼합하여 청색이 노란색으로 완전히 변하도록 한다.
15) 공기를 맹검으로 하여(Air blank) 음성 대조액, 양성 대조액 그리고 각 시료의 흡광도를 측정한다. 이때 흡광도의 측정 파장은 450 nm로 하고, 이중파장흡광도측정기 (dual wavelength reader) 를 사용할 경우 참조파장은 620 nm로 하며 반응 정지액을 넣고 1시간 이내에 흡광도 값을 측정 한다.
3. 결과판정
1) 정도관리
(1) 음성 대조액의 흡광도 값은 0.005 이상 0.200 이하이어야 하며, 만약 1개의 값이 위 범위를 벗어났을 경우 나머지 2개 값의 평균값으로 산출한다. 만약 2개 이상의 값이 위 범위를 벗어났을 경우 재실험을 하여야 한다.
(2) 양성 대조액의 흡광도 값은 1.000 이상이어야 한다. 양성 표준액의 평균 흡광도 값이 위 범위를 벗어난 경우에는 검사과정이나 시약에 문제가 있는 것이므로 그 원인을 확인한 후 재검사 하여야 한다.
2) 판정 기준값 (Cut-off) 계산 및 판정
(1) 음성 대조액 평균값 계산 : 상기 검사방법에 따라 음성 대조액의 흡광도를 얻은 다음 그 세 값의 평균값을 산출한다.
| 음성 대조액 번호 |
흡광도 (450 nm, 참조파장 620 nm) |
| 1 |
0.0450 |
| 2 |
0.0500 |
| 3 |
0.0480 |
| 합계 |
0.143 |
예) *음성 대조액의 평균 흡광도 : NCx = 0.143/3 = 0.047
(2) 양성 대조액 평균값 계산 : 상기 검사방법에 따라 양성 대조액의 흡광도를 얻은 다음 그 두 값의 평균값을 산출한다.
| 양성 대조액 번호 |
흡광도 (450 nm, 참조파장 620 nm) |
| 1 |
2.135 |
| 2 |
2.203 |
| 합계 |
4.338 |
예) *양성 대조액의 평균 흡광도 : PCx = 4.338/2 = 2.169
(3) 판정 기준값 (Cut-off) 계산
음성 대조액 평균흡광도(NCx)값에 0.300 을 더하여 판정 기준값을 구한다.
예) NCx + 0.300 = 0.047 + 0.300 = 0.347
3) 결과의 판정
(1) 음성 : 판정 기준값 미만의 흡광도값을 나타내는 검체는 음성으로 판정한다.
검체 내에 검출 가능한 뎅기 NS1 항원이 없음을 의미하나, 초기 감염이 의심 되는 환자의 경우, 7~14일 후 재검사 한다.
(2) 양성 : 판정 기준값 이상의 흡광도값을 나타내는 검체는 양성으로 판정한다.
검체 내에 검출 가능한 뎅기 NS1 항원이 존재함을 의미하나, 확실한 결과 판정을 위해 추가적인 진단이 필요하다.
4. 사용상의 주의사항
1) 시험 방법, 주의 사항, 결과 판정을 반드시 숙지한 후, 시험을 진행하여야 한다.
2) 검체 취급 관련 주의사항
(1) 검체에 함유된 아지드화 나트륨은 시험 결과에 영향을 미치지 않는다.
(2) 저온 살균된 검체(60℃에서 10 시간)는 반응성이 저하될 수 있으므로 사용하지 않는 다.
(3) 열처리에 의해 불활화된 검체 (56℃에서 1 시간)는 시험 결과에 영향을 미치지 않는다.
(4) 검체 채취 시 넣어주는 전형적인 항응고제 (EDTA, citrate, 헤파린) 는 실험 결과에 영 향을 미치지 않는다.
(5) 용혈이 심한 검체는 세포 구성분에 의해 부정확한 결과를 유발할 수 있으므로, 반드시 원심분리 후, 검사한다.
(6) 검체에 포함된 류머티즘인자는 검사 결과에 영향을 미칠 수 있다.
(7) 검체에 포함된 지방성 물질이나 황달 치료제는 검사 결과에 영향을 미치지 않는다.
3) 시험 중 검체가 제대로 들어가지 않으면 위음성 결과를 나타낼 수 있으므로, 임상적으로 양성이 의심되는 검체가 음성 결과를 나타낸 경우 재시험해야 한다.
1. 체외진단용 시약으로만 사용한다.
2. 다른 롯트의 시약과 혼합하여 사용할 수 없다.
3. 금속성 이온과 산화 물질에 오염되지 않은 깨끗한 유리 용기를 사용해야한다.
4. 실험 중, 감염 가능물질을 취급할 때는 1회용 비닐장갑 등을 착용하고 취급 후에는 손을 세정제로 깨끗이 닦는다.
5. 기질액 A, B 시약과 반응 정지액은 피부에 닿지 않도록 주의하시오. 피부에 닿았을 경우, 흐르는 물로 깨끗이 씻어내야 한다.
6. 검체를 취급할 때, 음식물 섭취나 흡연을 하지 않는다.
7. 검체나 시약이 주변에 튀지 않도록 주의한다.
8. 검체나 시약을 흘린 경우, 살균제를 이용하여 깨끗이 소독해야한다.
9. 실험에 사용한 고형폐기물은 121℃에서 1시간이상 고압 증기 멸균하여 폐기한다.
10. 실험에 사용되었던 액체 폐기물은 차아염소산나트륨 용액을 1% 이상 되도록 첨가하여 12시간이상 담가 감염성을 완전히 제거한 후에 폐기한다.
11. 패키지가 파손됐거나, 파우치의 밀봉이 벗겨진 경우 사용하지 않는다.
12. 정확한 결과를 얻기 위해서는 제품설명서를 반드시 숙지한 후, 실험을 진행하여야 한다.
13. 용혈이 심하거나 미생물이 심하게 오염된 검체는 부정확한 결과를 나타낼 수 있으므로 신선한 검체를 시료로 사용한다.
14. 검체를 여러 번 동결, 용해시키면 위음성을 초래할 수 있으니 주의한다.
15. 사용 후 남은 시약은 2 ~ 8℃에 보관한다.
16. 검체는 혈청에 한하여 사용하며 다른 용액으로 (예 : 1% BSA 등) 검체를 희석할 경우 위양성 반응을 나타낼 수 있으므로, 반드시 키트에 포함된 검체 희석액으로 검체를 희석한다. 또한 검체를 넣지 않고 효소표지항체액만 넣어도 위양성 반응을 초래할 수 있다.
포장단위
| 포장단위 원료약품 |
96 tests/kit |
480 tests/kit |
| 마우스 항 뎅기 NS1 흡착 플레이트 |
1장 (96 wells/장) |
5장 (96 wells/장) |
| 농축효소표지 항체액 (101배 농축액) |
1병(0.2 ml/병) |
1병(1 ml/병) |
| 효소표지항체 희석액 |
1병(20 ml/병) |
1병(100 ml/병) |
| 검체희석액 |
1병(10 ml/병) |
1병(50 ml/병) |
| 양성대조액 |
1병(0.8 ml/병) |
1병(4 ml/병) |
| 음성대조액 |
1병(1.2 ml/병) |
1병(6 ml/병) |
| 기질액 A |
1병(10 ml/병) |
1병(50 ml/병) |
| 기질액 B |
1병(10 ml/병) |
1병(50 ml/병) |
| 농축 세척액(20배 농축액) |
1병(50 ml/병) |
2병(100 ml/병) |
| 반응 정지액 |
1병(20 ml/병) |
1병(100 ml/병) |
| 플레이트 밀봉 테이프 |
3장 |
15장 |
: 자사포장단위
| 저장방법 | 기밀용기, 2-8도 냉장보관 |
|---|---|
| 사용기간 | 제조일로부터 12개월 |
| 재심사대상 | |
| RMP대상 | |
| 포장정보 | 사용상의 주의사항 뒤에 별첨 |
| 보험코드 | |
| 보험약가 | |
| 보험적용일 |
| 년도 | 생산실적 |
|---|---|
| 2014 | 15,630 |
| 2013 | 3,953 |
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