| 성상 | 1) 항체 흡착 플레이트: 평편한 바닥 형태의 무색의 폴리스틸렌 플레이트 2) 효소표지 항체액: 엷은 적색의 액상 제제 3) 검체 희석액: 무색 또는 미황색의 액상 제제 4) 양성 대조액: 무색 또는 미황색의 액상 제제 5) 음성 대조액: 무색 또는 미황색의 액상 제제 6) 기질액 A: 무색의 액상 제제 7) 기질액 B: 무색의 액상 제제 8) 농축 세척액 (20배 농축액): 무색의 액상 제제 9) 반응정지액: 무색의 액상 제제 10) 플레이트 밀봉 테이프: 무색의 투명한 폴리에스테르 접착 테이프 |
|---|---|
| 업체명 | (주)에스디 |
| 전문/일반 | 전문의약품 |
| 허가일 | 2009-06-29 |
| 품목기준코드 | 200904574 |
| 표준코드 | 8806618014406, 8806618014413, 8806618014420 |
총량 : 1키트(96테스트) 중, 항체흡착플레이트(96wells) 1개, 효소표지항체액(5ml) 1병, 검체희석액(50ml) 2병, 양성대조액(0.8ml) 1병, 음성대조액(1.2ml) 1병, 기질액 A(10ml) 1병, 기질액 B(10ml) 1병, 농축세척액(50ml) 1병, 반응정지액(20ml) 1병, 플레이트 밀봉테이프 3장 - 항체흡착플레이트 | 성분명 : 마우스 항헬리코박터파이로리 단클론항체 | 분량 : 0.83 ± 0.166 | 단위 : 마이크로그램 | 규격 : 자사기준 | 성분정보 : | 비고 : 0.83㎍/웰
총량 : 1키트(96테스트) 중, 항체흡착플레이트(96wells) 1개, 효소표지항체액(5ml) 1병, 검체희석액(50ml) 2병, 양성대조액(0.8ml) 1병, 음성대조액(1.2ml) 1병, 기질액 A(10ml) 1병, 기질액 B(10ml) 1병, 농축세척액(50ml) 1병, 반응정지액(20ml) 1병, 플레이트 밀봉테이프 3장 - 반응정지액 | 성분명 : 황산 | 분량 : 1.616 | 단위 : 그램 | 규격 : 자사기준 | 성분정보 : | 비고 : 1.616g/20㎖
총량 : 1키트(96테스트) 중, 항체흡착플레이트(96wells) 1개, 효소표지항체액(5ml) 1병, 검체희석액(50ml) 2병, 양성대조액(0.8ml) 1병, 음성대조액(1.2ml) 1병, 기질액 A(10ml) 1병, 기질액 B(10ml) 1병, 농축세척액(50ml) 1병, 반응정지액(20ml) 1병, 플레이트 밀봉테이프 3장 - 양성대조액 | 성분명 : 불활화된 H.pylori 배양액 | 분량 : 0.8 | 단위 : 밀리리터 | 규격 : 자사기준 | 성분정보 : | 비고 :
총량 : 1키트(96테스트) 중, 항체흡착플레이트(96wells) 1개, 효소표지항체액(5ml) 1병, 검체희석액(50ml) 2병, 양성대조액(0.8ml) 1병, 음성대조액(1.2ml) 1병, 기질액 A(10ml) 1병, 기질액 B(10ml) 1병, 농축세척액(50ml) 1병, 반응정지액(20ml) 1병, 플레이트 밀봉테이프 3장 - 효소표지항체액 | 성분명 : 마우스 항헬리코박터파이로리 단클론항체-고추냉이과산화효소 접합체 | 분량 : 7 | 단위 : 마이크로그램 | 규격 : 자사기준 | 성분정보 : | 비고 : 7㎍/5㎖
사람 분변에 존재하는 헬리코박터 파이로리(Helicobacter pylori) 항원을 검출하는 정성검사
I. 검체 준비 및 저장방법
1. 검체의 준비
(1) 마이크로파이펫을 사용하여 1 ml의 검체희석액을 깨끗한 테스트 튜브에 넣는다.
(2) 분변 1 ~ 2 g에서 검체채취도구(면봉)로 서로 다른 4 ~ 5개소를 찔러 분변을 채취한다. 이때, 정확한 검사 결과를 위해 필요한 분변의 채취량은 약 50 mg에 해당한다.
(3) H. pylori 항원이 추출될 수 있도록 면봉을 검체희석액이 들어있는 튜브 바닥에 대고 누르면서 위/아래 및 좌/우로 10회 정도 돌려 추출한다.
(4) 분변추출액의 큰 분변 입자들이 가라앉도록 실온에 5 ~ 10분간 정치한 후, 사용한다.
※ 수분이 많이 함유된 분변검체나 설사 등의 검체는 검사하지 않는다.
2. 검체의 저장방법
(1) 분변 검체 수집 후, 즉시 사용하지 않을 경우에는 분변을 2 ~ 8℃에 보관하고 검사는 72시간 이내에 수행한다.
(2) 분변 검체 수집일로부터 검사까지 수일이 걸릴 경우에는 분변을 -20℃ 이하에 보관한다.
※ 검체는 반복적인 녹임과 동결을 피해야 한다.
II. 검사 전 준비과정
1. 검체
검체는 수집 즉시 시험하기를 권장하고, 냉장 또는 냉동 보관했을 경우에는 검사시작 전에 실온에 두어 완전히 해동된 후 사용한다.
2. 시약
냉장 보관되어 있는 항체 흡착 플레이트 및 시약은 검사 시작 약 30분 전에 실온에 둔다.
III. 개봉 후 시약의 저장방법 및 사용기간
| 개봉시약 |
보관조건 |
사용기간 |
| 항체 흡착 플레이트 |
2 ~ 8℃, 밀봉 |
키트 제조일로부터 18개월 이내 키트 제조일로부터 18개월 이내 |
| 효소표지항체액 |
2 ~ 8℃ |
|
| 검체 희석액 |
2 ~ 8℃ |
|
| 음/양성 대조액 |
2 ~ 8℃ |
|
| 기질액 (A 및 B) |
2 ~ 8℃ (밀봉, 암소) |
|
| 농축 세척액(20배 농축액) |
2 ~ 8℃ |
|
| 반응 정지액 |
실온 |
Ⅳ. 검사 방법
(1) 음성 대조액 (3 wells), 양성 대조액 (2 wells)과 분변추출액을 플레이트의 각 well에 100 ul 씩 넣는다.
(2) 시료가 분주된 플레이트의 각 well에 효소표지항체액을 25 ul 씩 분주하고 잘 혼합하여 밀봉테이프로 밀봉한 다음, 37±1℃ 항온기에서 60분간 반응시킨다.
(3) (2)의 반응이 진행되고 있는 사이 농축 세척액 (20배 농축액)을 정제수로 20배 희석하여 세척액을 제조한다. 세척액은 한 well 당 약 350 ul가 소요되며, 대조액 수 와 시료 수에 맞추어 준비한다. (예 : 증류수 950 ml에 농축세척액 50 ml을 첨가하여 제조한다.)
(4) (2)의 반응이 끝나면 각 well의 내용물을 흡입하여 버린 후, (4)에서 제조된 세척액을 well에 완전히 채우고 (well당 약 350 ul씩) 약 10초간 방치한 후, 용액을 흡입하여 버리는 과정을 5회 반복한다. 본 세척과정이 끝난 well 내에는 잔여 용액이 남지 않도록 완전히 제거한다.
(5) 기질액 A와 기질액 B를 1 : 1의 비율로 잘 섞어서 기질용액을 제조한다 (예 : 5 ml의 기질액 A와 5 ml의 기질액 B를 잘 섞어서 제조한다), 기질용액은 사용하고자 하는 well 당 100 ul가 소요되며, 대조액 수와 시료수에 맞추어 준비한다.
※ 기질용액은 제조 후 즉시 검사에 사용한다.
(6) 조제한 기질용액을 모든 well에 100 ul 씩 분주하고 첨부된 밀봉테이프로 밀봉하여 실온(15~30℃) 에서 10분 동안 반응시킨다.
(7) 반응 정지액을 모든 well에 100 ul 씩 넣고 잘 혼합한다.
(8) 공기를 맹검 (Air blank)으로 하여 음성 대조액, 양성 대조액 그리고 각 시료의 흡광도를 측정한다. 흡광도는 반응 정지액 주입 후, 30분 이내에 측정하며 흡광도의 측정 파장은 450 nm로 하고, 이중파장흡광도측정기 (dual wavelength reader)를 사용할 경우 참조파장은 620 nm로 하여 측정 한다.
V. 결과판정
(1) 판정 기준값 (Cut-off Value) 산출
ⓛ 음성 대조액 평균값 계산 : 상기 검사방법에 따라 3 well에서의 음성 대조액의 흡광도 값들을 얻은 후, 이들의 평균값을 산출한다.
예)
| 음성 대조액 번호 |
흡광도 (450 nm, 참조파장 620 nm) |
| 1 |
0.0450 |
| 2 |
0.0500 |
| 3 |
0.0480 |
| 음성 대조액의 평균 흡광도 (NCx ) |
0.0476 |
② 판정 기준값 계산
음성 대조액 평균흡광도 (NCx)값에 0.100 을 더하여 판정 기준값을 구한다.
예) 판정 기준값 = NCx + 0.100 = 0.047 + 0.100 = 0.147
③ 3개의 음성 대조액의 흡광도 값 각각은 0.100 이하여야하며, 각 음성대조액의 흡광도값은 평균 흡광도값의 0.47배 ~ 1.52배 범위에 있어야 한다. 만일 한 개의 값이 이 범위를 벗어나면 이를 버리고, 나머지 두 개의 값의 평균값을 평균흡광도 값(NCx)으로 한다, 두 개의 값이 이 범위를 벗어나면 시험 기술상의 문제나 시약의 변질로 인한 것으로 생각되므로 재시험을 실시해야 한다.
④ 양성 대조액의 흡광도 값은 모두 2.0 이상이여야하며, 각 양성 대조액의 흡광도 값은 평균 흡광도 값의 0.88배 ~ 1.12배 범위에 있어야 한다. 만약 이 기준에 적합하지 않을 경우에는 시험 기술상의 문제나 시약의 변질로 인한 것으로 생각되므로 그 원인을 확인하여 재시험을 실시한다.
(2) 판정
ⓛ 음성 : 판정 기준값 미만의 흡광도값을 나타내는 검체는 음성으로 판정한다.
② 양성 : 판정 기준값 이상의 흡광도값을 나타내는 검체는 양성으로 판정한다.
VI. 결과 판정시 주의사항
본 제제는 여러 가지 요인으로 인하여 위양성 또는 위음성 결과의 가능성을 완전히 배제할 수 없으므로, 본 제품의 결과만을 근거로 최종 진단을 해서는 안 되며 다른 검사 방법과 임상소견에 근거한 전문의의 판단에 의하여 최종 진단을 내려야 한다.
1) 체외진단용 시약으로만 사용한다.
2) 본 제품은 여러 가지 요인으로 위 양성, 위 음성 결과의 가능성을 완전히 배제할 수 없으므로 본 제품의 결과만을 기초로 최종 진단을 해서는 안 되며 다른 검사 방법과 임상소견에 근거한 전문의의 판단에 의하여 최종 진단을 내려야 한다.
3) 항생제, 프로톤 펌프 억제제 및 비스무스 제제 등을 처방받은 환자의 경우 위음성 반응이 나타날 수 있으므로 주의한다.
4) 검체는 분변에 한하여 사용하며 다른 용액으로 검체를 희석할 경우 위양성 반응을 나타낼 수 있으므로, 반드시 키트에 포함된 검체 희석액으로 검체를 희석한다. 또한 검체를 넣지 않고 효소표지 항체액만 넣어도 위양성 반응을 초래할 수 있다.
5) 검체를 여러 번 동결, 용해시키면 위음성을 초래할 수 있으니 주의한다.
6) 미생물이 심하게 오염된 검체는 부정확한 결과를 나타낼 수 있으므로 신선한 검체를 시료로 사용한다.
7) 사용 후 남은 시약은 2 ~ 8℃에 보관한다. 조제한 세척액은 실온에 보관하여 사용한다.
8) 검체는 Helicobacter pylori 혹은 미지의 바이러스 등의 감염 가능성이 있는 것이므로 취급에 주의한다.
9) 양성 대조액은 불활화된 헬리코박터 파이로리 균을 포함하고 있으나 감염 가능 물질로서 취급되어야 한다.
10) 감염 가능물질을 취급할 때는 1회용 비닐장갑 등을 착용하고 취급 후에는 손을 세정제로 깨끗이 닦는다.
11) 기질액과 반응 정지액은 피부에 닿지 않도록 주의하며 피부에 닿은 경우에는 즉시 물로 씻는다.
12) 실험에 사용되었던 액체 폐기물은 차아염소산나트륨 용액을 1% 이상 되도록 첨가하여 12시간이상 담가 감염성을 완전히 제거한 후에 폐기한다.
13) 실험에 사용한 고형폐기물은 121℃에서 1시간 이상 고압 증기 멸균하여 폐기한다.
포장단위
| 96 테스트/키트 |
480 테스트/키트 |
|
| 항체 흡착 플레이트 |
1장 (96 wells/장) |
5장 (96 wells/장) |
| 효소표지 항체액 |
5 ml × 1 |
25 ml x 1 |
| 검체 희석액 |
50 ml × 2 |
100 ml x 5 |
| 양성대조액 |
0.8 ml × 1 |
4 ml x 1 |
| 음성대조액 |
1.2 ml × 1 |
6 ml x 1 |
| 기질액 A |
10 ml × 1 |
50 ml x 1 |
| 기질액 B |
10 ml × 1 |
50 ml x 1 |
| 농축 세척액(20배 농축액) |
50 ml × 1 |
100 ml x 2 |
| 반응 정지액 |
20 ml × 1 |
100 ml x 1 |
| 플레이트 밀봉 테이프 |
3장 |
15장 |
| 검체 채취 도구 |
96개 |
480개 |
| 저장방법 | 기밀용기, 2-8도 냉장보관 |
|---|---|
| 사용기간 | 제조일로부터 18개월 |
| 재심사대상 | |
| RMP대상 | |
| 포장정보 | 자사포장단위(사용상의 주의사항 별첨 뒤에 작성) |
| 보험코드 | |
| 보험약가 | |
| 보험적용일 |
| 년도 | 생산실적 |
|---|---|
| 2014 | 1,509 |
| 2013 | 519 |
서울 부산 인천 대구 광주 대전 울산 경기 강원 충북 충남 전북 전남 경북 경남 제주 세종시